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        培養(yǎng)人多能干細(xì)胞

        更新時間:2019-04-01  |  點擊率:2327

         

                人多能干細(xì)胞(hPSCs)因其擁有分化為機體所有類型細(xì)胞的能力,使得hPSCs成為研究發(fā)育機制以及疾病機理MAX常用的工具,同時在再生醫(yī)學(xué)以及疾病治療領(lǐng)域也有非常廣泛應(yīng)用。人類多能干細(xì)胞因其來源不同又可分為胚胎干細(xì)胞(Embryonic stem cell,ESCs)和誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(induced pluripotent stem cells,iPS cells)。

                小鼠胚胎干細(xì)胞由Martin Evans在1970年從小鼠胚囊中分離獲得,小鼠胚胎干細(xì)胞就可以成功地在體外進行培養(yǎng)。人的胚胎干細(xì)胞的體外培養(yǎng)在1998年由美國科學(xué)家James Thomson培養(yǎng)成功。

                誘導(dǎo)多能干細(xì)胞是日本科學(xué)家山中伸彌(Shinay Yamanaka)團隊在2006年利用病毒載體將Oct4,Sox2,Klf4,c-Myc四個轉(zhuǎn)錄因子轉(zhuǎn)入小鼠胚胎成纖維細(xì)胞重編程而成。iPS細(xì)胞在細(xì)胞形態(tài)、基因蛋白表達(dá)、表觀遺傳修飾以及畸胎瘤形成能力與胚胎干細(xì)胞非常相似。2007年11月,山中伸彌實驗室成功將人皮膚纖維母細(xì)胞誘導(dǎo)成iPS細(xì)胞。2009年我國科學(xué)家周琪院士與曾凡一教授,利用iPS細(xì)胞,通過四倍體囊胚注射得到存活并具有繁殖能力的小鼠,世界上證明了iPS細(xì)胞的性。

                下面對多能干細(xì)胞不同培養(yǎng)體系以及傳代方法進行分析:

                多能干細(xì)胞MAX常見的培養(yǎng)體系有可以分為有血清培養(yǎng)系統(tǒng)跟無血清培養(yǎng)系統(tǒng):

                有血清系統(tǒng)為基礎(chǔ)培養(yǎng)基配干細(xì)胞級血清,同時添加bFGF等生長因子,此方法對血清要求較高,在目前國內(nèi)血清比較亂的情況下,購買的合格的血清是制約細(xì)胞培養(yǎng)的主要因素,同時該體系還需要滋養(yǎng)層細(xì)胞,培養(yǎng)方法較復(fù)雜。

                無血清干細(xì)胞培養(yǎng)系統(tǒng)發(fā)明大大簡化了干細(xì)胞培養(yǎng)流程,目前常用的為Gibco Essential8培養(yǎng)基與Stemcell Technologies 的mTesR系統(tǒng)。兩種系統(tǒng)均為無血清,不需要額外添加生長因子,同時擺脫了滋養(yǎng)層細(xì)胞的限制,通過包被培養(yǎng)板就可以達(dá)到細(xì)胞貼壁的目的。但是,以上兩種培養(yǎng)基價格不菲,同時因為含有牛血清白蛋白(BSA)經(jīng)常會有進口限制。以上產(chǎn)品也均有國內(nèi)替代,Applied Cell分別有人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(適用于Essential8 系統(tǒng)),以及Advance 人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(適用于mTesR系統(tǒng))。

                培養(yǎng)皿包被:目前有兩種常見的包被方法,分別為Matrix基質(zhì)膠包被以及 Vitronectin包被,以上兩種膠對溫度非常敏感,操作要求較高,需要全程低溫操作,同時現(xiàn)配現(xiàn)用。針對以上問題現(xiàn)在多家公司均有有即用型基質(zhì)膠(Gibco,Stemcell Tech,Applied Cell)推出。

                傳代:干細(xì)胞傳代經(jīng)過多年發(fā)展也逐步簡化,MAX初通過膠原酶消化,挑克隆法傳代;后續(xù)發(fā)展出機械傳代發(fā),多家公司也推出了細(xì)胞切割工具;至目前已經(jīng)可以做到使用消化液完成消化,消化液種類也多種多樣,分別有Accutase,Tryple以及無酶消化液,均可以達(dá)到很好的傳代效果。

                以下另附多能干細(xì)胞培養(yǎng)操作手冊:

                人iPS/ES細(xì)胞復(fù)蘇操作:

                人iPS/ES細(xì)胞的復(fù)蘇標(biāo)準(zhǔn)操作包括實驗前準(zhǔn)備工作和實驗過程中的具體操作,下面即人iPS/ES細(xì)胞的復(fù)蘇標(biāo)準(zhǔn)操作:

                1. 實驗前準(zhǔn)備工作:

                1.1 基質(zhì)膠鋪板、孵育及平衡:取出6孔板/12孔板,每孔內(nèi)加入1 mL/0.5 mL即用型基質(zhì)膠(AC-1001007),輕輕晃動6孔板/12孔板使基質(zhì)膠*覆蓋皿底,然后置于37℃,5% CO2培養(yǎng)箱中孵育1h~2h,在實驗前拿出并置于超凈工作臺/生物安全柜中室溫下平衡20min或2-8℃靜置過夜備用。如果暫時不用,可用Parafilm封口后2-8℃ 儲存,并于1周內(nèi)使用。

                注意:①干細(xì)胞復(fù)蘇過程中的基質(zhì)膠鋪板數(shù)由凍存細(xì)胞密度決定,一支凍存的干細(xì)胞的密度在1×106cells/mL左右,需要6孔板鋪1孔或12孔板鋪2孔基質(zhì)膠;②即用型基質(zhì)膠受熱易發(fā)生沉淀,即用即拿及時放回4℃冰箱保存且勿用手直接觸碰基質(zhì)膠液面所及的瓶身,防止生成沉淀,影響基質(zhì)膠質(zhì)量。

                1.2 實驗試劑平衡:人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000)在實驗前置于室溫中避光平衡30min~1h。

                1.3 超凈工作臺/生物安全柜照射紫外:在實驗前打開紫外燈照射30min進行滅菌。

                1.4 恒溫水浴鍋準(zhǔn)備:水浴鍋溫度設(shè)置在37℃用于hPSC細(xì)胞復(fù)蘇。

                2. 實驗具體操作步驟:

                2.1 提前加入人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000):復(fù)蘇前,先在15mL離心管中加入2~3mL的干細(xì)胞培養(yǎng)基備用。

                2.2 解凍:將從液氮中取出的凍存管快速浸入37℃溫水中,快速搖動,使其在1~2min內(nèi)快速解凍;

                注意:細(xì)胞從液氮中拿出的速度要快,盡量減少其暴露在室溫中的時間。

                2.3 離心:凍存管中的凍存液解凍后,將其吸出并緩慢逐滴滴入提前在15mL離心管中加入的干細(xì)胞條件培養(yǎng)基中,將15mL離心管置于低速離心機中配比平衡后,1000rpm/min離心3min;

                2.4 重懸:離心后棄上清加1mL人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000) 對干細(xì)胞沉淀進行吹吸混勻,吹吸3~5次左右。

                2.5 接種:吹吸均勻后,將已經(jīng)平衡好的即用型基質(zhì)膠(AC-1001007)棄掉,緩慢吹吸15mL離心管中的細(xì)胞懸液,緩慢吹吸3~5次,待細(xì)胞懸液混勻后,加入到6孔板/12孔板中鋪膠的孔內(nèi),且補全每孔2 mL/1 mL的培養(yǎng)體系。

                2.6 培養(yǎng):接種后的6孔板/12孔板可以置于倒置相差顯微鏡下觀察接種的干細(xì)胞密度以及細(xì)胞團塊大小,呈4個細(xì)胞以上的團塊較合格,水平十字輕輕晃動6孔板/12孔板使細(xì)胞均勻分布。并置于37℃,5% CO2的恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng),第2天觀察細(xì)胞貼壁情況;

                2.7 換液:從復(fù)蘇的時間開始每24h換液一次。

                注意:因培養(yǎng)基中活性成分只足夠維持一天,所以每24h應(yīng)及時更換新鮮培養(yǎng)基。

                人iPS/ES細(xì)胞擴增操作:

                人iPS/ES細(xì)胞的擴增標(biāo)準(zhǔn)操作包括實驗前準(zhǔn)備工作和實驗過程中的具體操作,下面即人iPS/ES細(xì)胞的擴增標(biāo)準(zhǔn)操作:

                1. 實驗前準(zhǔn)備工作:

                1.1 基質(zhì)膠鋪板、孵育及平衡:取出6孔板/12孔板,根據(jù)細(xì)胞密度決定傳代的孔數(shù)(細(xì)胞密度中等則可以按照1:2傳代,密度大則按照1:3或4傳代),并在每孔內(nèi)加入 1 mL/0.5 mL即用型基質(zhì)膠(AC-1001007),輕輕晃動6孔板/12孔板使基質(zhì)膠*覆蓋皿底,然后置于37℃,5% CO2培養(yǎng)箱中孵育1h~2h,在實驗前拿出并置于超凈工作臺/生物安全柜中室溫下平衡20min或2-8℃靜置過夜備用。如果暫時不用,可用Parafilm封口后2-8℃ 儲存,并于1周內(nèi)使用。

                注意:①通常早代次(<10代)的干細(xì)胞需要以較低的比例傳代,如1:2-1:3;成功建系的干細(xì)胞(10代以上)可以1:4-1:5的比例傳代,傳代的比例由細(xì)胞株的生長速率決定。比較理想的傳代時間間隔是3-5天一次,剛剛復(fù)蘇的細(xì)胞次傳代時間一般是復(fù)蘇后第5天。②即用型基質(zhì)膠受熱易發(fā)生沉淀,即用即拿及時放回4℃冰箱保存且勿用手直接觸碰基質(zhì)膠液面所及的瓶身,防止生成沉淀,影響基質(zhì)膠質(zhì)量。

                1.2 實驗試劑平衡:人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000)、人多能干細(xì)胞消化液(AC-1001008 )以及PBS緩沖液在實驗前置于室溫中避光平衡30min~1h。

                1.3 超凈工作臺/生物安全柜照射紫外:在實驗前打開紫外燈照射30min進行滅菌。

                2. 實驗具體操作步驟:

                2.1 清洗:拿出6孔板/12孔板棄去舊的人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000),貼壁緩慢加入1 mL/0.5 mL PBS緩沖液并輕輕晃動,然后沿培養(yǎng)皿邊緣吸去 PBS緩沖液;

                2.2 消化:在6孔板/12孔板中加入1 mL/0.5 mL人多能干細(xì)胞消化液(AC-1001008)使之覆蓋皿底,并置于CO2培養(yǎng)箱中2~5 min;

                注意:消化時間依據(jù)干細(xì)胞生長密度,如果密度中等且培養(yǎng)2~3天,消化時間可以控制在2 min~3min,若密度很大且培養(yǎng)4天以上消化時間可以控制在3 min~5min,消化時間快結(jié)束時可以拿到倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞消化情況,若在顯微鏡下觀察到大部分克隆邊緣以及克隆內(nèi)部細(xì)胞間出現(xiàn)間隙,即刻吸掉無酶消化液停止消化。

                2.3 吹打:吸掉人多能干細(xì)胞消化液(AC-1001008)后,立刻加入平衡好的2mL/1mL干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000),用移液槍扇形吹打培養(yǎng)皿底,吹吸次數(shù)保持在3~5次,使皿底貼附的干細(xì)胞集落脫落,輕柔緩慢吹吸混勻,制成干細(xì)胞懸液,并將其并轉(zhuǎn)移到15mL離心管中;

                注意:吹吸皿底細(xì)胞的力度要輕柔,吹打脫落和吹吸混勻的次數(shù)在3~5次為宜,盡量避免形成單細(xì)胞。如有少量細(xì)胞無法從皿底脫落,屬于正?,F(xiàn)象。如有大量細(xì)胞無法從皿底脫落,需延長消化時間。

                2.4 接種:待皿底的細(xì)胞全部吹下并加入到15mL離心管后,將已經(jīng)平衡好的即用型基質(zhì)膠(AC-      1001007)棄掉,緩慢吹吸15mL離心管中的細(xì)胞懸液,緩慢吹吸1~2次,待細(xì)胞懸液混勻后,加入到6孔板/12孔板中鋪膠的孔內(nèi),且補全每孔2mL/1mL的培養(yǎng)體系。

                2.5 培養(yǎng):接種后的6孔板/12孔板可以置于倒置相差顯微鏡下觀察接種的干細(xì)胞密度以及細(xì)胞團塊大小,呈4個細(xì)胞以上的團塊較合格,水平十字輕輕晃動6孔板/12孔板使細(xì)胞均勻分布。并置于37℃,5% CO2恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng),第2天觀察細(xì)胞貼壁情況;

                2.6 換液:從傳代的時間開始每24h換液一次。

                注意:因培養(yǎng)基中活性成分只足夠維持一天,所以每24h應(yīng)及時更換新鮮培養(yǎng)基。

                人iPS/ES細(xì)胞凍存操作:

                人iPS/ES細(xì)胞的凍存標(biāo)準(zhǔn)操作包括實驗前準(zhǔn)備工作和實驗過程中的具體操作,下面即人iPS/ES細(xì)胞的凍存標(biāo)準(zhǔn)操作:

                1. 實驗前準(zhǔn)備工作:

                1.1 實驗試劑平衡: 人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000)、人多能干細(xì)胞消化液(AC-1001008)以及PBS緩沖液在實驗前置于室溫中避光平衡30min~1h。

                1.2 超凈工作臺/生物安全柜照射紫外:在實驗前打開紫外燈照射30min進行滅菌。

                2. 實驗具體操作步驟:

                2.1 清洗:拿出6孔板/12孔板棄去舊的人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000),貼壁緩慢加入2mL/1mL PBS緩沖液并輕輕晃動,然后沿培養(yǎng)皿邊緣吸去 PBS緩沖液;

                2.2 消化:在6孔板/12孔板中加入2mL/1mL人多能干細(xì)胞消化液(AC-1001008)使之覆蓋皿底,并置于CO2培養(yǎng)箱中 2~5min;

                注意:消化時間依據(jù)干細(xì)胞生長密度,如果密度中等且培養(yǎng)2~3天,消化時間可以控制在2 min~3min,若密度很大且培養(yǎng)4天以上消化時間可以控制在3 min~5min ,消化時間快結(jié)束時可以拿到倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞消化情況,若在顯微鏡下觀察到大部分克隆邊緣以及克隆內(nèi)部細(xì)胞間出現(xiàn)間隙,即刻吸掉無酶消化液停止消化。

                2.3 吹打:吸掉人多能干細(xì)胞消化液(AC-1001008)后,立刻加入平衡好的 1~2 mL人多能干細(xì)胞培養(yǎng)基(AC-1001000),用移液槍扇形吹打培養(yǎng)皿底,吹吸次數(shù)保持在3~5次,使皿底貼附的干細(xì)胞集落脫落,輕柔緩慢吹吸混勻,制成干細(xì)胞懸液,并將其并轉(zhuǎn)移到15mL離心管中;

                注意:吹吸皿底細(xì)胞的力度要輕柔,吹打脫落和吹吸混勻的次數(shù)在3~5次為宜,盡量避免形成單細(xì)胞。如有少量細(xì)胞無法從皿底脫落,屬于正?,F(xiàn)象。如有大量細(xì)胞無法從皿底脫落,需延長消化時間。

                2.4 離心:待皿底的細(xì)胞全部吹下并加入到15mL離心管后,將15mL離心管置于低速離心機中配比平衡后,1000 rpm/min離心3 min;

                2.5 重懸:離心后棄上清,加入1 mL Serum-Free干細(xì)胞凍存液(AC-1001011/AC- 1001012)對干細(xì)胞沉淀進行吹吸混勻,吹吸3~5次后,將其加入到1.8mL凍存管中;

                注意:凍存液即用即拿,及時放回4℃冰箱。通常生長狀態(tài)相同且同時消化的細(xì)胞統(tǒng)稱為一批細(xì)胞。

                2.6 記錄:在凍存管上標(biāo)記凍存細(xì)胞種類、時間、操作者及細(xì)胞批次。

                2.7 -80℃冰箱平衡:凍存管置于-80℃冰箱過夜。

                注意:凍存管放置于-80℃冰箱時,要將凍存管直立放置,切忌凍存管斜放或橫放。

                2.8 液氮凍存:凍存管置于 -80℃冰箱過夜后,第2天將其置于液氮中進行長期保存。

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